Особенности минерального обмена у баранчиков на рапсовом и люпиновом рационах

В работе представлены результаты хронического физиологического эксперимента с использованием в качестве альтернативных источников протеина семян рапса и люпина белого. Методом периодов на фистулированных баранчиках при интенсивном откорме изучена постпрандиальная динамика кальция и фосфора в дуоденальном химусе и крови при введении в рацион (30% от концентратов) экспериментальных белковых кормов. Установлено, что низкоалкалоидный люпин метаболически безопасен, сохраняет нормальный обмен кальция и фосфора как на уровне кишечника, так и в сыворотке крови. Семена рапса блокируют рефлекторное выделение элементов с пищеварительными соками в сложнорефлекторную фазу пищеварения, снижая уровень кальция на 22,1% и фосфора на 18,6% (p <0,001) по отношению к контролю. В рубцовую фазу пищеварения при всасывании минеральных веществ из кишечника: экспериментальные корма формируют «транзитный фитатный блок», при котором концентрация кальция и фосфора увеличивается в химусе, но в кровь они не всасываются, что снижает фосфор крови на 40,1%. Одновременно наблюдается компенсаторный лейкоцитоз (рост WBC в 3,05 раза; связь r = – 0,91; p <0,001)

1. Морозова В.А. Альтернативные источники протеина в животноводстве ● Ветеринария и кормление, 2022. № 2. С. 32-37.

2. Giacona J.M., Afridi A., Petric U.B. et al. Association between dietary phosphate intake and skeletal muscle energetics in adults without cardiovascular disease ● Journal of Applied Physiology, 2024. Vol. 136, No. 4. Pp. 1007-1014. DOI: 10.1152/japplphysiol.00818.2023.

3. Егорова Т.А. Глюкозинолаты рапса и рыжика: состав, концентрации, токсичность и антипитательность для птицы, методы нейтрализации – мини-обзор ● Сельскохозяйственная биология, 2023. Т. 58. № 6. С. 1021-1034. DOI 10.15389/agrobiology.2023.6.1021rus. – EDN: GTRSLS.

4. Вертипрахов В.Г., Цуканова Е.С. Влияние семян рапса с разным содержанием эруковой кислоты на секреторную функцию поджелудочной железы кур ● Вестник КрасГАУ, 2009. № 8 (35). С. 110-113. EDN: KWQBUF.

5. Сидоров В.В. Минеральный статус овец при скармливании рационов на основе люпина ● Физиология и биохимия животных, 2020. Т. 46. № 3. С. 312-318.

6. Selle P.H., Ravindran V., Caldwell R.A., Bryden W.L. Phytate and phytase: consequences for protein utilisation ● Nutrition Research Reviews, 2000. Vol. 13. No. 2. Pр. 255-278. DOI: 10.1079/095442200108729098.

7. Карамушкина С.В., Вертипрахов В.Г. Динамика ферментативной активности дуоденального химуса овец в постпрандиальный период: к механизму регуляции пищеварения у жвачных ● Ветеринария, зоотехния и биотехнология, 2025. Т. 2. № 11. С. 55-63. DOI 10.36871/vet.zoo.bio.202511207. EDN: XHRUSR.

8. Карамушкина С.В., Жевнеров А.В. Особенности минерального обмена у овец при введении в рацион продуктов переработки сои ● Дальневосточный аграрный вестник, 2025. Т. 19. № 3. С. 56-62. DOI 10.22450/1999-6837-2025-19-3-56-62. EDN: PXHJMH.

9. FASS. Guide for the Care and Use of Agricultural Animals in Research and Teaching ● 3rd ed. Champaign, IL: Federation of Animal Science Societies, 2010. 169 p.

10. Алиев А.А. Хронические фистулы рубца и двенадцатиперстной кишки у овец. Методика и техника подготовки ● Животноводство, 1998. № 6. С. 34-38.

11. Козлов В.А., Морозова А.В., Семенов Е.И. и др. Рапсовый шрот как замена соевого шрота в рационах молочных коров ● Молочное и мясное скотоводство, 2020. № 3. С. 45-49.

12. Вертипрахов В.Г., Цуканова Е.С. Влияние семян рапса с разным содержанием эруковой кислоты на секреторную функцию поджелудочной железы кур ● Вестник КрасГАУ, 2009. № 8 (35). С. 110-113. EDN: KWQBUF.

13. Яговенко Т., Афонина Е. Биохимические свойства зерна белого люпина ● Комбикорма, 2018. № 3. С. 66-68. EDN: YSLBXU.

14. Gresta F., Oteri M., Scordia D. et al. White lupin (Lupinus albus L.), an alternative legume crop for animal feeding in the Mediterranean ● Agriculture, 2023. Vol. 13. No. 2. Art. 434. DOI: 10.3390/agriculture13020434.

15. Morquecho-Campos P., Bikker F.J., Nazmi K. et al. A stepwise approach investigating salivary responses upon multisensory food cues ● Physiology & Behavior, 2020. Vol. 226. Art. 113116. DOI: 10.1016/j.physbeh.2020.113116.

16. Chondrou T., Adamidi N., Ligouras D. et al. Dietary phytic acid, dephytinization and phytase supplementation modulate macronutrient bioavailability – a review of human studies ● Nutrients, 2024. Vol. 16. No. 23. Art. 4069. DOI: 10.3390/nu16234069.

17. Нецветаев В.П., Князева И.В., Огуля А.П., Сорокопудова О.А. Генетический контроль синтеза белков семян белого люпина (Lupinus albus L.) ● Генетика, 2013. Т. 49. № 6. С. 778. DOI 10.7868/S001667581305010X. EDN: QAXJKL.

18. Зверев С. Белый люпин – альтернатива сое ● Птицепром, 2016. № 2 (31). С. 46-48. EDN: XVDLNX.

19. Moran E.T., Bedford M.R. Basis for the diversity and extent in loss of digestible nutrients created by dietary phytin: Emphasis on fowl and swine ● Animal Nutrition, 2024. Vol. 16. P. 422-428. DOI: 10.1016/j.aninu.2023.11.010.

20. Eisenberg S.W.F., Ravesloot L., Koets A.P., Grünberg W. Effect of dietary phosphorus deprivation on leukocyte function in dairy cows ● Journal of Dairy Science, 2019. Vol. 102. No. 3. Pр. 2561-2571. DOI: 10.3168/jds.2018-15491.

21. Grünberg W. Treatment of Phosphorus Balance Disorders ● Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 2014. Vol. 30. No. 2. Pр. 383-408. DOI: 10.1016/j.cvfa.2014.04.004.

22. Libera K., Konieczny K., Witkowska K. et al. The Association between Selected Dietary Minerals and Mastitis in Dairy Cows-A Review ● Animals (Basel), 2021. Aug. 7;11(8):2330. DOI: 10.3390/ani11082330. PMID: 34438787; PMCID: PMC8388399.